今卡-生物图像提供:

  • 1. 客观的H&E切片图像自动分析。

  • 2. 客观的PAS切片图像自动分析。

  • 3. 客观的免疫荧光图像自动分析。

  • 4. 客观的多重免疫荧光/空间蛋白组学细胞距离分析。

客观的图片分析,能够避免人为主观分析的各种缺点,比如(1)相对随意的图片区域选择(2)不同分析人员之间的标准差异(3)同一分析人员不同时间的标准差异等,因此可以保证结果的可重复性

1. 客观的H&E切片图像自动分析流程

1.1 理论基础

各种原因导致的炎症都伴随白细胞的浸润1,或直观理解为病灶部位细胞增多,其通常通过H&E切片染色进行鉴别2

本流程通过计数H&E切片中的相对细胞(核)总数相对细胞核总面积,以实现客观的H&E切片自动分析。

1.2 流程和实例

说明:示例所用组织切片使用3DHISTECH公司出品的Pannoramic 250 FLASH数字病理切片扫描仪进行扫描,采用20×明场物镜,获得全幅高分辨率数字图像,并保存为.mrxs格式以供分析。本示例切片的.mrxs格式文件大小约600 M。

2. 客观的PAS切片图像自动分析流程

2.1 理论基础

PAS染色主要用于染色含有高比例碳水化合物(包括糖原)的结构3,比如用于小鼠肺哮喘模型的粘液分泌鉴别4

本流程通过计数PAS切片中的相对PAS阳性颗粒总数相对PAS阳性颗粒总面积,以实现客观的PAS切片自动分析。

2.2 流程和实例

说明:示例所用组织切片使用3DHISTECH公司出品的Pannoramic 250 FLASH数字病理切片扫描仪进行扫描,采用20×明场物镜,获得全幅高分辨率数字图像,并保存为.mrxs格式以供分析。本示例切片的.mrxs格式文件大小约600 M。

3. 客观的免疫荧光图像自动分析流程

3.1 理论基础

免疫荧光(IF)是一种重要的免疫化学技术,能够在不同类型的组织和各种细胞制备中检测和定位多种抗原5,比如用于分析胞内菌和宿主细胞互作6、用于肿瘤的免疫治疗7等。

本流程通过无差别的选择视野(图片)中的所有胞内菌,并进行特定光通路对应区域的信号强度分析、及共定位分析,以实现客观的免疫荧光图像自动分析。

3.2 流程和实例

说明:示例所用共聚焦图片通过莱卡共聚焦显微镜获得,采用40×物镜,图片保存格式为tif。

4. 客观的多重免疫荧光/空间蛋白组学细胞距离分析流程

4.1 理论基础

多重免疫荧光/空间蛋白组学染色可以用于分析蛋白的空间表达、定位、相互作用,及细胞的空间分布、相互作用等8。举例来说,Franken等通过含62个抗体组合(Akoya Biosciences,美国)的空间蛋白组学比较分析了头颈部鳞状细胞癌患者接受anti-PD-L1+anti-CTLA4或anti-PD-L1治疗后的肿瘤微环境的细胞差异和细胞相互作用差异9

本流程通过无差别的选择全片(图片)中的所有细胞、并进行细胞类型鉴别和细胞定位,以实现客观的多重免疫荧光/空间蛋白组学细胞距离分析。

4.2 流程和实例

说明:该流程参考自10.

References

1.
Coussens, L. M. & Werb, Z. Inflammation and cancer. Nature 420, 860–867 (2002).
2.
Haan, K. de et al. Deep learning-based transformation of h&e stained tissues into special stains. Nature Communications 12, (2021).
3.
Singh, I., Weston, A., Kundur, A. & Dobie, G. Chapter 1 - introduction. in Haematology case studies with blood cell morphology and pathophysiology 1–8 (Elsevier, 2017). doi:10.1016/b978-0-12-811911-2.00001-5.
4.
Khumalo, J., Kirstein, F., Scibiorek, M., Hadebe, S. & Brombacher, F. Therapeutic and prophylactic deletion of IL‐4Ra‐signaling ameliorates established ovalbumin induced allergic asthma. Allergy 75, 1347–1360 (2020).
5.
Im, K., Mareninov, S., Diaz, M. F. P. & Yong, W. H. An introduction to performing immunofluorescence staining. in Biobanking 299–311 (Springer New York, 2018). doi:10.1007/978-1-4939-8935-5_26.
6.
7.
8.
Lundberg, E. & Borner, G. H. H. Spatial proteomics: A powerful discovery tool for cell biology. Nature Reviews Molecular Cell Biology 20, 285–302 (2019).
9.
10.
Franken, A., Bila, M. & Lambrechts, D. Protocol for whole-slide image analysis of human multiplexed tumor tissues using QuPath and r. STAR Protocols 5, 103270 (2024).